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儀器網/ 應用方案/ 細胞培養基本方法

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(一)準備和安裝 清洗好過濾器,干燥,放入一張孔徑0.22m的微孔濾膜,用布包裝好,15磅20 min進行高壓滅菌處理在超凈臺內打開過濾器架好,膠管一端接入濾泵再插入待CJ的液體中,出口端膠管深入到已消毒好的瓶子中用泵過濾,過濾后要檢查濾膜是否完好無損 (二)合成培養基的配制 1根據細胞目錄中的說明,按下表選擇合適品牌及貨號的培養基干粉,用適量超純水充分溶解 2 按要求添加碳酸氫鈉谷氨酸鈉HEPES等,充分攪拌使之溶解 3 調 pH至7.2左右 4 加水至Z終體積 5 在超凈臺中對溶液進行濾過CJ,分裝入250 mL或500 mL玻璃瓶中,用翻帽塞塞緊瓶口 6 瓶口封好,4冰箱貯存 (三)小牛血清的處理 市場上出售的小牛血清一般做了滅菌處理,但在使用前還應做熱滅活處理,即通過加熱的方法破壞補體(近來也有觀點認為熱滅活處理是不必要的)胎牛血清不必滅活 1 將血清加熱至56并保持30 min,其間要不時輕輕晃動,使受熱均勻,防止沉淀析出 2 處理后的血清貯存于4 3 小牛血清在使用前**進行篩選以掌握血清的質量 (四)生長培養基的配制 除無血清培養之外,各種合成培養基在使用前需加入一定量的小牛血清或胎牛血清和KJ素 1. 培養基分裝成小瓶(100~200 mL)以便使用,翻帽塞塞緊瓶口 2. 按如下比例配制: 基本培養基占80%~90%,小牛血清或胎牛血清占10%~20%按1%體積分數加入雙抗貯存液(青霉素+鏈霉素),使青霉素和鏈霉素的終濃度分別為100 U/mL和100/mL, (五)凍存細胞的復蘇 1. 應遵守慢凍快融的原則先將水浴鍋調至37-375度,取出凍存的細胞迅速放入后將細胞面浸至水面以下不斷搖動至融化 2. 在無菌臺內將完全培養基加入50ml的小培養瓶內,約5ml左右,然后用無菌吸管從凍存管內取出細胞,置培養并內輕輕搖晃,使細胞均勻后置培養箱內培養 (六)傳代: 1. 貼壁細胞: 對于貼壁細胞應先吸(倒)盡培養基,吸的越干凈越好,以免中和后加入的消化液,使強度減弱(或PBS洗1-3次)50ml培養瓶加入消化液約1-3ml,按此比例進行消化,(根據經驗),晃動使消化液鋪均勻置37度培養箱約2-5分鐘,鏡下見細胞收縮變圓或少數脫落后,輕輕振動瓶底使細胞全部脫落,加入2-3ml完全培養基后,輕輕吹打,使細胞基本成單個懸浮,然后分置其它無菌培養瓶內,加入完全培養基后繼續培養或實驗 2. 懸浮細胞: 一般傳代可直接將細胞原液分置其它培養瓶內,加入完全培養基繼續培養,如要高濃度可先離心1000rpm,5min后加入完全培養基,輕輕吹勻后,分置其它培養瓶內加入完全培養基繼續培養 (七)凍存 將貼壁細胞消化后離心收集,懸浮細胞直接離心收集,以完全培養基或胎牛血清重懸細胞至終濃度約106/ml加入10%的DMSO以每管1~2ml分裝至凍存管中用絕熱材料包裹置-70攝氏度冰箱冷凍過夜次日保存到液氮中 (八)注意事項 1. 玻璃吸管和玻璃培養瓶的消毒:1)高壓蒸汽滅菌15分鐘以上;2)干烤消毒140度2小時以上; 2. 無菌工作臺先清洗后用75%酒精擦拭干凈,紫外線照射40分鐘以上;各種培養板照射3小時以上; 3. 培養基(pH7.2)和血清配制好后要做無菌試驗:將血清按10%加入培養基內,用無菌的玻璃離心管或玻璃瓶取完全培養基5-10ml置培養箱內培養2-3天,肉眼見無渾濁或沉淀等異物分裝后置4度保存; 4. 消化液(pH7.8)或其它加入液,應用高壓蒸汽滅菌或一次性無菌濾器過濾CJ,分裝成支置-20度保存; 5. 培養箱應先用清水清洗后用75%酒精擦拭一遍(如有紫外線的應照射1小時以上,如有高溫滅菌的應按程序來菌)至少每月一次 6. 進入操作時應注意先清洗雙手及手腕,然后用75%酒精擦拭,操作時注意無菌臺內空間層次手及物品不要在暴露的瓶口上方來往,如果數量較多,培養瓶應放在與酒精燈平行地方便于操作,瓶與瓶之間應相隔一定的距離,開瓶(蓋)時應先用75%酒精反復擦拭或用燈燒,打開后應用燈先燒口,然后燒蓋用完后同樣操作整個操作過程盡量在無菌臺靠里面一點 上海一恒電熱恒溫鼓風干燥箱

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